Preview

Сахарный диабет

Расширенный поиск

Морфологическая характеристика эпителия слизистой оболочки бронхиального дерева при стрептозотоциновом диабете

https://doi.org/10.14341/DM2013444-48

Полный текст:

Аннотация

Цель.
 Изучить состояние эпителиального пласта бронхиального дерева на модели экспериментального сахарного диабета.
Материалы и методы.
 Объектом исследования были 47 белых крыс линии Wistar с массой 234,00?2,64 г, в возрасте 5?6 месяцев. Контрольную группу составляли 43 интактных белых крыс (самцы) линии Wistar с массой тела 242,00?2,13 г в возрасте 5?6 месяцев.
Модель стрептозотоцинового диабета воспроизводили однократным интраперитонеальным введением стрептозотоцина (SIGMA, США) в 0,1 М цитратном буфере, рН 4,5, крысам Wistar в дозе 60 мг/кг.
Результаты.
 Было зафиксировано статистически достоверное уменьшение общей площади эпителиального пласта в группе крыс с сахарным диабетом на 25,9%, которое сопровождалось уменьшением надъядерной зоны на 22,1% при сравнении с показателями в контрольной группе.
Заключение.
 Установлено развитие атрофических изменений слизистой оболочки бронхов в группе крыс с экспериментальным диабетом, а также снижение физических защитных факторов в виде уменьшения продукции слизи секреторними клетками бронхиальной выстилки.

Об авторах

Оксана Анатольевна Пивоварова
ГУ Луганский государственный медицинский университет, Луганск
Украина
кандидат медицинских наук, доцент кафедры внутренней медицины


Борис Никитич Манковский
Национальная медицинская академия последипломного образования им. П.Л. Шупика, Киев
Украина
доктор медицинских наук, профессор, член-корреспондент НАМН Украины, заведущий кафедрой диабетологии


Список литературы

1. Vila-Corcoles A, Ochoa-Gondar O. Pneumococcal vaccination among adults with chronic respiratory diseases: a historical overview. Expert Review of Vaccines. 2012;11(2):221–236.

2. DOI: 10.1586/erv.11.176

3. Kheradmand F, Shan M, Xu C, Corry DB. Autoimmunity in chronic obstructive pulmonary disease: clinical and experimental evidence. Expert Review of Clinical Immunology. 2012;8(3):285–292.

4. DOI: 10.1586/eci.12.7

5. Mukhopadhyay S, Hoidal JR, Mukherjee TK. Role of TNF-alpha in pulmonary pathophysiology. Respiratory research. 2006;7:125–130.

6. Parker C,Thavagnanam ST, Skibinski G,Heaney LG, Shields MD.Mechanisms of lung infection in the community and hospital setting:S86 effects of exposure to IL-13, IL-31 and an IL-13/31 combination on mucociliary differentiation of bronchial epithelial cells. Thorax.2010;65(Suppl 4):A40.

7. doi: 10.1136/thx.2010.150938.37

8. Pasteur MC, Bilton D,Hill AT. British thoracicsociety guideline for non-CFbronchiectasis.Thorax.2010;65(Suppl 1):i1–i58.

9. DOI: 10.1136/thx.2010.136119

10. Lee P, Khoo KL. A review of current bronchoscopic interventions for obstructive airway diseases. Therapeutic Advances in Respiratory Disease. 2012;6(5):297–307.

11. DOI: 10.1177/1753465812455448

12. Lommatzsch SE, Martin RJ.Importance of fiberoptic bronchoscopy in identifying asthma phenotypes to direct personalized therapy. Current opinion in pulmonary medicine. 2013;19(1):42–48.

13. DOI: 10.1097/MCP.0b013e32835a5bdc

14. Mirrakhimov AE. Chronic obstructive pulmonary disease and glucose metabolism. Cardiovascular Diabetology. 2012;11:132.

15. DOI: 10.1186/1475-2840-11-132

16. ClayAS, BehniaM, BrownKK. Mitochondrial disease: A pulmonary and critical-care medicine perspective. Chest. 2001;120(2):634–648.

17. DOI: 10.1378/chest.120.2.634

18. Maniscalco WM, Watkins RH, O'Reilly MA, Shea CP. Increased epithelial cell proliferation in very premature baboons with chronic lung disease. American Journal of Physiology – Lung Cellular and Molecular Physiology. 2002;283(5):L991–L1001.

19. DOI: 10.1152/ajplung.00050.2002

20. Skjøt-Arkil H, Clausen RE, Nguyen QH, Wang Y, Zheng Q, Martinez FJ, et al. Measurement of MMP-9 and -12 degraded elastin (ELM) provides unique information on lung tissue degradation. BMC Pulmonary Medicine. 2012;12:34.

21. DOI: 10.1186/1471-2466-12-34

22. Tam A, Wadsworth S, Dorscheid D, Man SFP, Sin DD. The airway epithelium: more than just a structural barrier. Therapeutic Advances in Respiratory Disease. 2011;5(4):255–273.

23. DOI: 10.1177/1753465810396539

24. Ходзицкая ВК. Нарушение и коррекция мукоцилиарного клиренса при заболеваниях дыхательных путей. Болезни и антибиотики. 2010;1(3):5–12. [Khodzitskaya VK. Narushenie i korrektsiya mukotsiliarnogo klirensa pri zabolevaniyakh dykhatel'nykh putey. Bolezni i antibiotiki. 2010;1(3):5–12].

25. Wood AM, Stockley RA. Editorial: Unifying the genetics, co-morbidities and management of COPD. Therapeutic Advances in Respiratory Disease. 2008;2(3):113–117.

26. DOI: 10.1177/1753465808092282

27. Березин АЕ. Биологические прогностические факторы риска у пациентов с внебольничной пневмонией. Клиническое значение, ожидания и перспективы. Український медичний часопис. 2010;77(3):81–87. [Berezin AE. Biologicheskie prognosticheskie faktory riska u patsientov s vnebol'nichnoy pnevmoniey. Klinicheskoe znachenie, ozhidaniya i perspektivy. Ukraїns'kiy medichniy


Для цитирования:


Пивоварова О.А., Манковский Б.Н. Морфологическая характеристика эпителия слизистой оболочки бронхиального дерева при стрептозотоциновом диабете. Сахарный диабет. 2013;16(4):44-48. https://doi.org/10.14341/DM2013444-48

For citation:


Pivovarova O.A., Mankovsky B.N. Morphology of bronchial epithelium in rodent streptozotocin-induced diabetes mellitus. Diabetes mellitus. 2013;16(4):44-48. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/DM2013444-48

Просмотров: 63


ISSN 2072-0351 (Print)
ISSN 2072-0378 (Online)