Морфологическая характеристика эпителия слизистой оболочки бронхиального дерева при стрептозотоциновом диабете
https://doi.org/10.14341/DM2013444-48
Аннотация
Изучить состояние эпителиального пласта бронхиального дерева на модели экспериментального сахарного диабета.
Материалы и методы.
Объектом исследования были 47 белых крыс линии Wistar с массой 234,00?2,64 г, в возрасте 5?6 месяцев. Контрольную группу составляли 43 интактных белых крыс (самцы) линии Wistar с массой тела 242,00?2,13 г в возрасте 5?6 месяцев.
Модель стрептозотоцинового диабета воспроизводили однократным интраперитонеальным введением стрептозотоцина (SIGMA, США) в 0,1 М цитратном буфере, рН 4,5, крысам Wistar в дозе 60 мг/кг.
Результаты.
Было зафиксировано статистически достоверное уменьшение общей площади эпителиального пласта в группе крыс с сахарным диабетом на 25,9%, которое сопровождалось уменьшением надъядерной зоны на 22,1% при сравнении с показателями в контрольной группе.
Заключение.
Установлено развитие атрофических изменений слизистой оболочки бронхов в группе крыс с экспериментальным диабетом, а также снижение физических защитных факторов в виде уменьшения продукции слизи секреторними клетками бронхиальной выстилки.
Об авторах
Оксана Анатольевна ПивовароваУкраина
кандидат медицинских наук, доцент кафедры внутренней медицины
Борис Никитич Манковский
Украина
доктор медицинских наук, профессор, член-корреспондент НАМН Украины, заведущий кафедрой диабетологии
Список литературы
1. Vila-Corcoles A, Ochoa-Gondar O. Pneumococcal vaccination among adults with chronic respiratory diseases: a historical overview. Expert Review of Vaccines. 2012;11(2):221–236.
2. DOI: 10.1586/erv.11.176
3. Kheradmand F, Shan M, Xu C, Corry DB. Autoimmunity in chronic obstructive pulmonary disease: clinical and experimental evidence. Expert Review of Clinical Immunology. 2012;8(3):285–292.
4. DOI: 10.1586/eci.12.7
5. Mukhopadhyay S, Hoidal JR, Mukherjee TK. Role of TNF-alpha in pulmonary pathophysiology. Respiratory research. 2006;7:125–130.
6. Parker C,Thavagnanam ST, Skibinski G,Heaney LG, Shields MD.Mechanisms of lung infection in the community and hospital setting:S86 effects of exposure to IL-13, IL-31 and an IL-13/31 combination on mucociliary differentiation of bronchial epithelial cells. Thorax.2010;65(Suppl 4):A40.
7. doi: 10.1136/thx.2010.150938.37
8. Pasteur MC, Bilton D,Hill AT. British thoracicsociety guideline for non-CFbronchiectasis.Thorax.2010;65(Suppl 1):i1–i58.
9. DOI: 10.1136/thx.2010.136119
10. Lee P, Khoo KL. A review of current bronchoscopic interventions for obstructive airway diseases. Therapeutic Advances in Respiratory Disease. 2012;6(5):297–307.
11. DOI: 10.1177/1753465812455448
12. Lommatzsch SE, Martin RJ.Importance of fiberoptic bronchoscopy in identifying asthma phenotypes to direct personalized therapy. Current opinion in pulmonary medicine. 2013;19(1):42–48.
13. DOI: 10.1097/MCP.0b013e32835a5bdc
14. Mirrakhimov AE. Chronic obstructive pulmonary disease and glucose metabolism. Cardiovascular Diabetology. 2012;11:132.
15. DOI: 10.1186/1475-2840-11-132
16. ClayAS, BehniaM, BrownKK. Mitochondrial disease: A pulmonary and critical-care medicine perspective. Chest. 2001;120(2):634–648.
17. DOI: 10.1378/chest.120.2.634
18. Maniscalco WM, Watkins RH, O'Reilly MA, Shea CP. Increased epithelial cell proliferation in very premature baboons with chronic lung disease. American Journal of Physiology – Lung Cellular and Molecular Physiology. 2002;283(5):L991–L1001.
19. DOI: 10.1152/ajplung.00050.2002
20. Skjøt-Arkil H, Clausen RE, Nguyen QH, Wang Y, Zheng Q, Martinez FJ, et al. Measurement of MMP-9 and -12 degraded elastin (ELM) provides unique information on lung tissue degradation. BMC Pulmonary Medicine. 2012;12:34.
21. DOI: 10.1186/1471-2466-12-34
22. Tam A, Wadsworth S, Dorscheid D, Man SFP, Sin DD. The airway epithelium: more than just a structural barrier. Therapeutic Advances in Respiratory Disease. 2011;5(4):255–273.
23. DOI: 10.1177/1753465810396539
24. Ходзицкая ВК. Нарушение и коррекция мукоцилиарного клиренса при заболеваниях дыхательных путей. Болезни и антибиотики. 2010;1(3):5–12. [Khodzitskaya VK. Narushenie i korrektsiya mukotsiliarnogo klirensa pri zabolevaniyakh dykhatel'nykh putey. Bolezni i antibiotiki. 2010;1(3):5–12].
25. Wood AM, Stockley RA. Editorial: Unifying the genetics, co-morbidities and management of COPD. Therapeutic Advances in Respiratory Disease. 2008;2(3):113–117.
26. DOI: 10.1177/1753465808092282
27. Березин АЕ. Биологические прогностические факторы риска у пациентов с внебольничной пневмонией. Клиническое значение, ожидания и перспективы. Український медичний часопис. 2010;77(3):81–87. [Berezin AE. Biologicheskie prognosticheskie faktory riska u patsientov s vnebol'nichnoy pnevmoniey. Klinicheskoe znachenie, ozhidaniya i perspektivy. Ukraїns'kiy medichniy
Рецензия
Для цитирования:
Пивоварова О.А., Манковский Б.Н. Морфологическая характеристика эпителия слизистой оболочки бронхиального дерева при стрептозотоциновом диабете. Сахарный диабет. 2013;16(4):44-48. https://doi.org/10.14341/DM2013444-48
For citation:
Pivovarova O.A., Mankovsky B.N. Morphology of bronchial epithelium in rodent streptozotocin-induced diabetes mellitus. Diabetes mellitus. 2013;16(4):44-48. https://doi.org/10.14341/DM2013444-48

Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License (CC BY-NC-ND 4.0).